三、牛布氏桿菌病
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(一) 病名及病原
1. 病名: 布氏桿菌病又稱 Bang 氏病,或傳染性流產 2. 病原: 牛之布氏桿菌病由流產布氏桿菌 (Brucella abortus) 所引起。一般稱布氏桿菌病仍指各種布氏桿菌在哺乳類所引起之病症,但若提到牛,則指流產布氏桿菌 (Brucella abortus) 所引起之病症。流產布氏桿菌有 9 個生物型,各型在生化上及血清學反應彼此不同,但均會被流產布氏桿菌嗜菌體所分解,且於氧化代謝試驗均有特徵性。 (二) 疾病簡介
布氏桿菌病為一種細菌性急性或慢性傳染病,以胎盤炎及流產為特徵。流產布氏桿感菌除感染牛外,很少感染其他動物,但常會感染人類。 (三) 典型之臨床症狀及病理變化 牛布氏桿菌病主要之臨床症狀是流產,它常發生於接近分娩期。自然感染在懷孕第 6-8 個月發生率最高。流產後 1-2 週會有混濁之子宮分泌液排出,懷孕後期之流產常會發生胎衣滯留。 牛群之感染主要由引入帶菌牛隻而起,污染擴散後,初次爆發流產,其流產率可達 30% 以上,而後流產率逐漸下降,但在牛群中之第 1 胎懷孕牛或新引進未感染牛仍會有很高之流產率。公牛感染時,早期發燒伴以一側或雙側之睪丸及精囊急性腫痛,數週後症狀消失,睪丸變大而硬,精液中含炎症滲物及活菌。病灶大部僅限於生殖系統、胎盤炎、胎盤及其四週組織充滿滲液及壞死組織而使其呈灰色到黃色。子宮壁,尤其在子宮角彎有水腫,子宮絨毛膜間充滿細菌、滲液及鱗脫之絨毛細胞,感染之睪丸及細精管組織含炎症滲出液及壞死區,到感染後期,睪丸組織由於壞死而萎縮及纖維性增生。 (四) 應採病材
細菌之分離及鑑定為本病最可靠之診斷方法。細菌學分離之樣品為:(1) 子宮滲出液;流產期及流產後 1-2 週。在此期間內,以滅菌棉棒放入陰道抹拭,拭後把棉棒放入滅菌之試管中,密封後送檢。(2) 流產胎兒之胃內容物、肺、脾及胎糞作細菌學培養檢查最有價值。胃內容物之採取法;以熱壓舌片燒圴胃壁,再以滅菌之吸管穿過燒灼區,取一些內容物入滅菌之容器中。肺、脾及胎糞則以無菌操作採取病材,放入滅菌容器中,立即送試驗室。(3) 胎膜,由布氏桿菌感染而引起之流產,在胎膜中常含有大量布氏桿菌,胎膜應仔細檢查,採取呈暗灰黃色之整個子葉放入滅菌容器中。(4) 乳液、乳房感染布氏桿菌常局限於一或數個乳房,故乳液病材最好各乳房均各採集約 20ml。採集前乳房先洗淨,乳頭以酒精消毒並擦乾後,先擠棄 1-2ml,再擠乳液入滅菌之容器中,冷藏保存並速送檢。(5) 血液:在發病期之牛血中亦會有布氏桿菌之存在,血液以抗凝劑抗凝,採集後冷藏立即送檢。(6) 動物屍體,布氏桿菌對不同之動物有不同之偏好,故採取作為分離之組織在牛依序為;乳房淋巴結,咽背淋巴結,腸間淋巴結,腰淋巴結,脾臟,各對乳房組織,及子宮。在山羊及綿羊則為;乳房淋巴結,頜下 ( 或咽背 ) 淋巴結,腸間淋巴結,每邊之乳房組織,子宮及脾臟。淋巴組織週圍以噴燈略作消毒後,以滅菌之器械切下放於滅菌容器中,冷藏送檢。 (五) 綜合診斷 1.病原分離及同定 分離使用 Trypticase soy agar(BBL),Tryptic soy agar,Tryptose agar(DIFCO) 或 Dextrose agar 等培養基,加 5% 馬血清,為防止污染可使用選擇培養基,上述加血清培養基,每1,000ml 添加 Cycloheximide 100mg,Bacitracin 2,500 IU,polymyxin B 6,000 IU,及 1:800,000 ethyl violet。Cycloheximide 1g 溶於 5ml 之 acetone 後,再加滅菌蒸餾水到 100ml,混合後分裝保存於冰箱可使用 6 個月。Bacitracin 及 Polymyxin B 則分別以滅菌蒸餾水溶成每 ml 含 2,500IU 及 6,000IU 之液,分裝凍結保存,前者使用期 2 週,後者使用期較長,但溶解後剩液應棄之。Ethyl violet 可用 0.1% 液,但使用期勿超過 3 個月。
病材之接種方法;陰部棉拭可直接塗佈培養基表面。流產胎兒之胃內容物,以白金耳或棉拭塗抹培養基表面,胎糞可直接塗抹培養基,胎兒組織以刀或剪刀切片再作塗抹培養。胎膜較易污染,故培養前應以滅菌生理鹽水清洗 3 次以上,洗後以滅菌力剪切片,塗於固體培養基表面。牛乳以 6,000-7,000g15 分鐘離心後,取其沉澱物及乳脂塗抹於固體培養基表面。血液在培養前有人先予冷凍處理,但亦有直接培養者,血液培養通常使用 Castaneda 血液培養瓶,為扁平瓶一面有固體培養基,而其下部則為含抗凝劑 (2% 枸櫞酸鈉 ) 之液體培養基,血液樣品若未混合抗凝血劑,則抽血後應立即放入瓶中與含抗凝劑之培養液混合,在固體培養基作全面接種後,瓶應直立放置,每 3 天檢查 1 次,若無可疑菌落出現,則把瓶側傾讓液體流到固體培養基上,然後放直立再繼續培養。由大動物採得較大塊之組織可通過火焰或浸乙醇再以火焰燒烤滅菌,之後組織以刀剪切片,切面塗抹於培養基之表面,小動物之小塊組織應儘可能無菌採集,以避免塗抹前之火焰消毒,組織病材亦可在去油脂後,剪取無污染之部份作成乳劑後塗抹培養。
病原菌之動物接種分離:病材若無污染,為加強分離率,對含菌量較少之組織,分泌物及排泄物,可把病材乳劑腹腔內接種 2 到數頭天竺鼠,如為牛乳或已分解之動物組織,則以皮下或肌肉內接種為宜。牛乳離心後取其沉澱及乳酪混合物接種,若固體病材則加少量滅菌生理鹽水再以乳化器乳化後接種。接種後第 3 週及第 6 週各剖檢半數之接種鼠,部檢前均採血測試血清凝集力價。但病材若嚴重污染,接種之天竺鼠常會在數天內死亡,病材若含本病原菌,則剖檢可見淋巴結、脾臟與四肢關節腫大,肝臟壞死病灶,睪丸及副睪膿腫等病變。然後以無菌操作,由其脾臟、淋巴結或其他病灶組織切面再分離病原菌,此時可用不加抗生素及色素之血清培養基。血清凝集試驗若為陽性,即使分離未呈陽性亦確認為陽性。
病材接種培養基後放 10%CO 恒溫箱,37℃ 經 5-7 天,布氏桿菌選擇培養基上形成帶青色透明小圓形菌落,流產布氏桿菌通常為平滑型菌落。菌落初步之鑑定可在玻片上放 2 滴生理鹽水,由菌落取下一些菌體懸於其中,再分別各加 1 滴抗流產布氏桿菌血清及正常血清,混合後檢查有否布氏桿菌之特異性凝集現象。
布氏桿菌呈桿狀或球桿狀,在組織中呈團塊或單個,人工培養有時呈短鏈狀。無運動性及芽胞,初分離時偶而有莢膜。革蘭氏陰性菌,雖非抗酸菌,但可抗弱酸脫色,此特性可供本菌之鑑別染色用;Modified Ziehl-Neelsen method:細菌塗片火焰固定後,以稀釋 10% 之 Ziehl Neelsen carbol fuchsin 液 (Basic fuchsin 1g,絕對酒精 10ml,5%phenol 90ml) 染色 10 分鐘,水洗,以 0.5% 醋酸脫色 10-30 秒,水洗後以 1% 之 methylene blue 作對比染色 20 秒,結果菌體呈紅色而背景為藍色。Modified Koster method:細菌火焰固定片以 2 份飽和safranin液與 5 份 1M KOH 混合液染色 1 分鐘,水洗,以 0.1% 硫酸脫色 10-20 秒,水洗後以 1%methylene blue 作對比染色 20 秒,結果本菌成橙紅色而背景為藍色。
布氏桿菌於 blood agar 不產生溶血,在 MacConkey agar 上有些菌株會發育但絕不會發酵 lactose,在含 1%glucose 之 phenol red agar 中不會利用 glucose 產酸而使其變色,布氏桿菌各菌種間之形狀及代謝極相近,但可以表 1 之性狀予以區別之,其中之色素發育試驗,色素先以蒸餾水泡成 0.1% 液,放蒸氣中 20 分鐘或沸水中 1 小時滅菌後。依所需量加入溶融之布氏桿菌用培養基而使用。
2.血清學診斷由於操作簡單及可靠性很高,血清學試驗已被廣泛應用於診斷布氏桿菌病。 (1)凝集試驗 血清凝集試驗為牛及人類布氏桿菌病主要使用之血清學方法。 a. 標準平板凝集試驗:
抗原:平滑型全菌 ( 約 4%) 懸於 0.5% 石碳酸生理鹽水,以國際或國家標準血清調節其精確濃度為 30 國際標準單位 (IU) 之血清可產生凝集而 20IU 者則否。
操作步驟:玻璃板上放 1 滴抗原與 1 滴血清混合,4 分鐘內產生凝集塊者為陽性反應,否則為陰性。b. 緩衝市氏菌抗原 (Buffered Brucella antigen,BBA)
標準平板凝集抗原之敏感性極佳,但特異性不佳,常造成很多之假陽性,為改善此缺點,把抗原懸於酸性緩衝液中,以去除其非特異性反應。
抗原:平滑型全菌懸於 pH 3.65 之 Buffer(NaOH 12g,lactic acid 54ml,加 0.5% 石碳酸生理鹽水到 600ml),此種抗原稱 (BBA),為使反應結果容易觀察,把加入之菌體以色素 Rose Bengal 色素染色即為目前國內使用之玻瑰苯平板凝集抗原,另美國使用之 Card test 亦使用此類抗原。抗原之標準化如上之抗原調整。
操作方法:如標準平板凝集試驗。c. 乳環凝集試驗
抗原:平滑型全菌體以 Haematoxylin 染色後,菌體濕重 1:27(w/v) 懸於 pH 4.0 之 buffer(NaC1 8.5g,phenol 5ml,IM citric acid 2.6, 0.5M Na2HPO4 1ml,加蒸餾水到 1,000ml)。
操作步驟:小試管中放 1ml 經冷藏 48-72 小時之乳液,加 1 滴 (0.03ml) 抗原,以食指蓋住管口,輕輕倒轉數次以混合,直立放 37℃1 小時後判定。乳酪層之藍色若比乳液層深為陽性,若較淺或相等則為陰性。d. 試管凝集試驗
抗原:與標準平板凝集抗原相似,但濃度約為其 1/10,經以國際標準血清調整濃度,使其與 2 IU 之血清呈 50% 凝集。
操作步驟:血清以 0.5% 石碳酸生理鹽水,自 1:5、1:10、1:20、…,作 2 倍稀釋,加入等量之抗原混合後,放 37℃ 1 夜後判定。判定以血清最終稀釋 1:40 血清稀釋倍 1:20)呈 50% 凝集 (++) 為陽性,1:20( 血清稀釋 1:10) 呈 50% 凝集 (++) 為疑陽性,為求判定正確,可同時作如下之判定標準液作比較 ( 表 2)。e. Coomb test
有些動物血清所含氏桿菌病特異性抗體與抗原結合後卻不會凝集,推測仍某些抗體原結合位被佔住,阻止凝集素之凝集反應,即所謂之不完全抗體。Coombs 試驗仍利用 Coombs 試劑,引起凝集反應 Coombs 試劑仍待測動物血清球蛋白或全血清異性抗血清。Coombs 試驗,應用於牛血清時亦稱為抗牛球蛋白 (Anti-bovine globulin,ABG) 試驗。
抗原:懸於生理鹽水之全菌抗原。可把試管凝集試驗用抗原離心,並以生理鹽水洗 3 次後重懸為原濃度菌液而使用。
操作步驟:待檢血清以生理鹽水稀釋後,加作等量原液,放 37℃ 1 夜,無凝集反應之試管離心 2500g 20 分鐘,倒去上清液,離心時應避免溫度上升使抗體與抗原之結合脫離。沉澱以生理鹽水洗 3 次,第 3 次心沉澱懸於原量之生理鹽水稀釋定量之 Coombs 試劑。試管再放於 37℃24 小時後,依一般凝集試驗作判定。其力價通常以呈 50% 或以上凝集之最高最終稀釋倍數 1:40 或以上為陽性。
另一種改良方法是,於最後階段改用平板試驗,在初次試驗洗 3 次後之沉澱,加入 3-4 滴之生理鹽水懸浮,取 1 滴與 1 滴稀釋 Coombs 試劑放玻璃板上,以牙籤混合,再放入密封之潮濕盒中,放 37℃30 分鐘後,以低倍顯微鏡或放大鏡觀察。此步驟最好作一對照試驗,即玻璃板上放懸液 2 滴,其中 1 滴與 1 滴稀釋 Coombs 試劑混合,另 1 滴與 1 滴生理鹽水混合,放 37℃30 分鐘後判定,如此可知其凝集是否為特異性之反應。免疫球蛋白與抗原結合即會與補體結合而產生反應,當抗原為紅血球時則產生溶血,若抗原為微生物或其成份,雖不能產生可見之變化,但補體已被抗原一抗體複合物利用而結合,此時再加紅血球及其免疫球蛋白,因無可利用之補體而不能產生溶血。由此而偵測血清中有否特異性抗體之存在。 抗原:布氏桿菌全菌或其脂多醣 (lipopolysaccharide,LPS) 抗原,其力價在一般商品化抗原約含 100 倍。 材料:Barbital buffer saline(BBS):Barbital sodium 3.75g,Barbital 5.75g,NaC1 85g,MgCl2 0.475g,CaCl2 0.185g,加蒸餾水溶成 2000ml 之原液,使用時再稀釋 5 倍。 補體:由 10 頭以上天竺鼠採集之混合血清,分裝存於 -70℃,使用之力價為可使測定系統產生 50% 溶血之 4 倍強度 ( 即 4 單位 ),補體取出使用後剩液即丟棄。3% 綿羊紅 血球:綿羊血球以 BBS 洗 3 次後,懸於 BBS 中而成。溶血素,即綿羊紅血球之免疫球蛋白懸於 50% 甘油液 (DIFCO) 者相當穩定,其溶血力價需經測定,購得之 DIFCO 此類產品,其完全溶血力價約為 2,000 倍,因此採其略高力價,稀釋 1:1,500 而使用。3% 綿羊紅血球與等量之稀釋血紅素混合,放 4℃ 感作 1 夜即成敏感紅血球。 補體結合試驗之操作如表 3,當血清對照陰性 (100% 溶血 ) 而血清稀釋 1:5 或以上有 50% 以上溶血抑製 (++) 時,即為陽性。補體結合試驗之成績為目前國內布氏桿菌病血清學診斷之主要法定依據,本試驗陽性時,即使其他試驗陰性,亦判為陽性。 布氏桿菌病之其他血清學試驗很多,包括 Rivanol test、2-Mercaptoethanol 試驗、螢光抗體試驗、凝膠溶血試驗 (Hemolysis in gel)、放射線免疫試驗 (Radioimmuno assay)、酵素標示免疫吸附試驗 (ELISA)、斑點酵素免疫吸附試驗 (DOT-ELISA)、淋巴球變形試驗 (Lymphocyte transformation test) ,及皮內接種延遲性過敏試驗等,但均未正式立法於應用於本病之診斷。
(1)肉眼病變 本病之病灶大部僅限於生殖系統,病情嚴重時,突發之流產,絨毛尿膜內面嚴重不均勻水腫,胎盤水腫,胎盤及其四週組織有混濁滲出液及壞死組織。胎盤子葉由正常之粉紅色變為灰色到黃色。子宮壁,尤其孕子宮角小彎常會有水腫。有些母牛會有關節炎之滑囊炎。在公牛,感染之精囊變硬腫,單側性或雙側性睪丸炎及副睪炎,感染之睪丸變大而硬,常粘附於其鞘膜,切面常有一到數個發炎病灶或壞死。 絨毛膜上皮細胞脫落,未脫落者細胞質脹大充滿細菌,細胞核變模糊。子宮內膜及絨毛膜間充滿細菌、滲出液及脫落之絨毛細胞。胎盤四週炎症滲出液浸潤子宮內膜及子宮腺腔。感染之睪丸細精管有壞死區、滲出液及細菌之聚落。病情更進一步,則大部之細精管破壞或萎縮而失去作用。精囊呈慢性炎症、纖維性增生、局部腺細胞發炎及壞死。 孕母豬之流產、產後胎盤滯留及不孕症。公畜睪丸炎,睪丸腫大或萎縮,不孕症。 (六) 確診依據 血清學陽性反應及病原菌之分離 (七) 參考文獻 1. 李太矜、王宗枝。1954。本省傳染性流產菌症血清學診斷之研究。台灣農林,8:34-37。 2. 吳義興、謝快樂、呂清泉。1980。玫瑰苯抗原之試製及應用於本省牛布氏桿菌病之診斷。臺灣省家畜衛生試譣所研究報告,16:1-4。 3. 吳義興、楊揚輝、李新進。1985。布氏桿菌病乳環試驗抗原之試製及應用。臺灣省中華民國獸醫學會雜誌,11:17-21。 4. 吳義興、葉明穎、楊揚耀。1987。硫氫乙醇 (Mercaptoethanol) 凝集試驗應用於牛布氏桿菌病之血清學診斷。中華民國獸醫學會雜誌,136:261-264。 5. 吳義興。1987。應用酵素標示免疫吸附法 (ELISA) 測定本省牛布氏桿菌病血清抗體。中華民國獸醫學會雜誌,13:109-117。 6. 陳素貞、吳義興、王金和、蘇杰夫。1982。牛布氏桿菌病試管凝集試驗抗原之製造。台灣省畜牧獸醫學會會報,40:35-38。 7. 陳素貞、蘇杰夫、王金和。1981。台灣牛布氏桿各種血清診斷法之比較。中華民國獸醫學會雜誌,7:25-27。 8. 陳守仕、蘇杰夫、陳素貞、鄭建盛、蔡義雄、張瑞森、吳福明、劉正義。1979。血清學調查、病原分離和鑑定及對天竺鼠之病原性。中華民國獸醫學會雜誌,5:71-77。 9. 楊子儒、高建祥、詹益波、王炯辰。1963。布氏桿菌病酸性抗原平板凝集反應之研究。臺灣省家畜衛生試驗所研究報告,1:66-71。 10. 劉燃炎、呂榮修、楊喜全、劉義雄。1963。台灣奶牛傳染性繁殖障害之研究 (Ⅰ) 由血清反應察看台灣之布氏桿菌症及胎兒弧菌症。臺灣省家畜衛生試驗所研究報告,1:79-85。 11. 劉燃炎、呂榮修、楊喜全、劉義雄。1963。台灣奶牛傳染性繁殖障害之研究 (Ⅱ) 台灣布氏菌症反應陽性牛細菌分離成績報告。臺灣省家畜衛生試驗所研究報告,1:86-90。 12. 劉燃炎、呂榮修、謝竹茂。1955。台灣省家畜對於牛流產菌人工感染反應試驗。台灣省畜牧獸醫學會會報,1:49-53。 13. Alonso-urmeneta B.,Moriyon I.,Diaz R. and Blasco J.M. 1988. Enzymelinked immunosorbent assay with Brucella native hapten polysaccharide and smooth lipopolysaccharide. J. Clin. Microbiol. 26:2642-2646. 14. Alton G.G., Jones L.M. and Dietz D.E. 1975. Laboratory techniques in Brucellosis. 2nd ed. WHO monograph series No. 55, Geneva. 15. Bartra H. V., Chand P., Ganju L., Mukherjee R. and Sadana J.R.1989. Dotenzyme linked immunosorbent assay for the detection of antibodies in bovine brucellosis. Research in Vet. Sci. 46:143-146. 16. Bundle D.R., Cherwonogrodzky J.W., Caroff M. and Perry M.B. 1987. The lipopolysaccharides of Brucella abortus and melitensis. Ann. Inst. Pasteur Microbiol. 138:92-98. 17. Corbel M. J. 1985. Recent advances in the study of Brucella antigens and their serological cross-reactions. Vet. Bull. 55:927-942. 18. Corbell L.B., Blau K., Inzana T.J., Nielsen K.H., Jacobson R.H., Corbell R.R. and A.J. Winter. 1988. Killing of Brucella abortus by bovine serum. Infect. Immun. 56:3251-3261. 19. Cunningham B. 1968. Serological response in cattle following vaccination with S. 19 and killed Brucella 45/20 aduvant vaccine. Vet. Rec. 82:3-7. 20. Detilleux P.G.,Cheville N.F.and Deyoe B.L. 1988. Pathogenesis of Brucella abortus in chicken embryos. Vet. Pathol. 25:138-146. 21. Dillender M.J., Buening G.M. and McLaughlin K.K. 1984. Hemolysis in gel test for detection of bovine antibodies to Brucella abortus:Comparison of antigens and test modification. AJVR 45:1222-1224. 22. Dubray G. and Limet J. 1987. Evidence of heterogenicity of lipopolysaccharides among Brucella biovars in relation of A and M specificities. Ann. Inst. Pasteur Microbiol. 138:27-37. 23. Galanos C., Luderitz O. and Westphal O.1969. A new method for the extraction of R lipopolysaccharides. Eur. J. Biochem. 9:245-249. 24. Gurin-Bastuji B., Bowden R.A., Dubray G. and Limet J.N. 1990. Sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis and immunoblotting analysis of smothlipopolysaccharide heterogeneity among Brucella biovars related to A and M specificities. J. Clin. Microbiol. 28:2169-2174. 25. Hoffmann E.M. and Houle J.J.1986. Purification of nonlipopolydaccharide antigen from Brucella abortus during preparation of antigen used for indirect hemolysis test. J. Clin. Microbiol.24:779-784. 26. Hornitzky M. and Searson J., 1986. The relationship between the isolation of Brucella abortus and serological status of infected, nonvaccinated cattle. Aust. Vet. J. 63:172-174. 27. Limet J.N., Berbinschi A.C., Cloeckaert A., Cambiaso C.L. and Masson P.L. 1988. Longitudinal study of brucellosis in mice by immunoassay of lipopolysaccharide-related antigens in blood and urine. J. Med. Microbilol. 26:37-45. 28. Limet J.N., Bosseray N., Garin-Bastuji B., Dubray G. and Plommet M. 1989. Humoral immnunity in mice mediated by monoclonal antibodies against A and M antigens of Brucella. J. Med. Microbiol. 30:37-43. 29. Meador V.P., Warner D.P. and Deyoe B.L. 1988. Distribution of Brucella abortus organisms in calves after conjunctival exposure. AJVR 49:2015-2017. 30. Meikle P. L., Perry M. B., Cherwonogrodzky J. W. and Bundle D.R. 1989. Fine structure of A and M antigens from Brucella biovars. Infect. Immun. 57:2820-2828. 31. Moreno E., Speth S.L., Jones L.M and Berman D.T. 1981. Immunochemical charactererization of Brucella lipopolysaccharides and polysaccharides. Infect. Immun. 31:214-222. 32. Moreno E., Borowiak D. and Mayer H. 1987. Brucella lipopolysaccharides and polysaccharides. Ann. Inst. Pastur Microbiol. 138B:102-105. 33. Moreno E., Pitt M. W., Jones L. M., schurig G. G. and Berman D.T. 1979. Purification and characterization of smooth & rough lipopolysaccharides from Brucella abortus. J. Bacteriol. 138:361-369. 34. Nielsen K., Stiller J., Adams G. and Williams R. 1983. Binding of Brucella abortus whole cell and lipopolysacchride antigens to plastics. Res. Vet. Sci. 34:131-137. 35. Nielsen K.H., Heck F.C., Stiller J.M. and Rosenbaum B. 1983. Interaction of specfically purified isotypes of bovine antibody to Brucella abortus in the haemolysis in gel test and enzyme-linked immunosorbent assay. Res. In Vet. science 35:14-18. 36. Nielsen K.H. and Henning M.D. 1989. Bovine monoclone antibody specific for Brucella abortus lipopolysaccharide. Vet. Immunol. and Immunopath. 21:363-372. 37. Nielsen K., Ballinger R., Stiller J. and Rosenbaum B. 1985. A ":Dipstick" enzyme immunoassay for detection of antibody to Brucella abortus in cattle sera. Canadian Journal of Comparative Medicine, 49:298-302. 38. Palmer D.A. & Douglas J.T. 1989. Analysis of Brucella lipopolysaccharides with specific cross-reacting monoclonal antibodies. J. Clin. Microbiol. 27:2331-2337. 39. Philips M., Pugh G.W. and Deyoe B.L. 1989. Chemical and protective properties of Brucella lipopolysaccharides obtained by butanol extraction. AJVR 50:311-317. 40. Rogerson B.A. and Morgan I.R. 1986. Investigation of aberrant positive reactions to serological tests for bovine brucellosis. Aust. Vet. J. 63:227-230. 41. Scanlan C.M., Stringfellow D.A., Hannon S.S, and Galik P.A. 1983. Laboratory diagnosis of bovine Brucellosis. Auburn Vet. Spring:6-11. 42. Verstreate D. R., Creasy M. T., Caveney N. T., Baldwin C. L., Balb M.W. and Winter A.J. 1982. Outer membrane proteins of Brucella abortus:Isolation and Characterization. Infect. Immun. 35:979-989. 43. erstreate D.R. and Winter A.J. 1984. Comparison of sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis profiles and antigenic relatedness among outer membrane proteins of 49 Brucella abortus strains. Infection and Immunity 46:182-187. 44. Wilson G.S. and Miles A.A. 1932. The serological differentiation of smooth strains of the Brucella group. Br. J. Exp. Pathol. 13:1-13. 45. Wu A.M., Adams L.G. and Pugh R. 1987. Immunochemical and partial chemical characterization of fractions of membrane-bound smooth lipopolysaccharide-protein compexes from Brucella abortus. Mol. Cell. Biochem. 75:93-102. (八) 附錄 表 1. 布氏桿菌各菌種之一些性狀比較菌 種CO 需求HS 產生Basic fuchsin
1:50,000Thionin
1:25,000Thionin
1:50,000phage
RTDTb 溶解
10000xRTDB. melitensis --+
-+--B. abortus +(-)+(-)+-+(-)++B. suis ---or+++-+B. neotomae -+----+B. ovis +-+++--B. canis ---++--註 +(-):大部份菌株陽性,少數陰性。-or+:陰性及陽性菌株約各半。
Tb:Tbilisi RTD:一般試驗濃度。表 2. 試管凝集試驗判定之標準液添 加 之
試 劑凝 集 程 度++++++++++-石碳酸鹽水 ml 10.750.50.250抗原 (1:2)ml 00.250.50.751清澈之百分率 1007550250