雞黴漿菌症實驗室診斷標準操作程序(以下簡稱本標準)所制定之內容係提供實驗室處理相關病材、操作病毒之各種生物活性及診斷鑑定時所必須之程序,以確保實驗室操作人員之安全性,及維持對本病診斷鑑定之精確性與快速性。 |
|
1. |
家禽黴漿菌症病原學的診斷:
引起家禽之呼吸器性症狀的疾病相當複雜,惟有就患禽進行病原的分離方為正確診斷的方法;雞黴漿菌M.gallisepticum較一般細菌特殊,也因此其分離上較為困難,非一般之培養基所能培養,必須在含有血清的特殊人工培養基上方得增殖發育,本標準引導試者如何取材及培養基之配製,進而培養方法以達成病原體之分離。 |
2. |
雞黴漿菌症血清學的診斷:
家禽經黴漿菌感染後,於其血清中即產生對該菌種之特異性抗體,故可藉黴漿菌製成的抗原以不同之血清學反應試驗(如凝集,血球凝集抑制等),對雞隻罹患本症之診測。 |
|
|
1. |
恒溫振盪水槽 |
2. |
恒溫CO2培養器 |
3. |
組織磨碎機 |
4. |
高壓蒸氣消毒器 |
5. |
顯微鏡 |
6. |
陰陽壓真空幫浦 |
7. |
高速遠心機 |
8. |
超低溫冰櫃(-70~-100℃) |
9. |
普通水箱 |
10. |
細菌過濾器(0.2,0.45μ) |
11. |
凝集玻璃片 |
12. |
96孔U字型微量塑膠凝集盤 |
13. |
黴漿菌液體培養基 |
14. |
吸管(1.2.5.10.20ml) |
15. |
小試管 |
16. |
M.gallisepticum菌種 |
17. |
受測雞全血 |
18. |
Sodium azide |
19. |
結晶紫 |
20. |
Bacto PPLO broth (w/o CV Difco) |
21. |
Alsever液 |
22. |
馬血清 |
23. |
Thallium acetate |
24. |
磷酸緩衝食鹽液 |
25. |
中型滅菌塑膠培養皿 |
26. |
小手術刀 |
27. |
奇異筆 |
28. |
滅菌綿花棒 |
29. |
解剖器材(含解剖刀、小剪刀、鉗子、止血鉗..) |
30. |
新鮮酵母抽出液 |
31. |
Penicillin G |
32. |
病材(檢體) |
33. |
phenol red |
34. |
Agar |
35. |
Triphenyltetrazolium chloride |
36. |
硫酸銨 |
37. |
L.arginine |
38. |
葡萄糖 |
39. |
M.gallisepticum標準血清 |
40. |
Freund adjuvant ( complete & incomplete ) |
41. |
家兔 |
42. |
牛心肌浸出物 |
43. |
獸肉蛋白 |
44. |
雞肉、心、肝抽出物 |
|
|
1. |
培養材料的採取及保存:
為分離M.gallisepticum,其主要取材部住係由雞隻之氣管眼下洞、氣囊、肺等處取之。
(1) |
氣管粘液之採取:患禽經解剖後以無菌小剪刀將氣管縱的剪開,再以無菌棉花棒,拭擦氣管內的粘液,置入含有培養液(1 ~ 0.5 ml)試管內,冷凍保存於-70℃超低溫冰櫃內備用。 |
(2) |
眼窩下洞粘液之採取:以碘酒拭擦患禽的眼下部皮膚,再以小剪刀切開,將薄膜切除露出眼下洞,再以無菌棉花棒拭取粘液,置入含有培養液(1 ~ 0.5 ml)試管內,冷凍保存於-70℃超低溫冰櫃內備用。 |
(3) |
氣囊及肺之採取:患禽經解剖後以無菌方式操作,採取前後之氣囊及肺之病變部,置入含有培養液(1 ~ 0.5 ml)試管內,冷凍保存於-70℃超低溫冰櫃內備用。 |
|
|
|
2. |
培養基配製及培養
(1) |
培養基之配製:應用國安氏之Barber的變法或Hofstad氏之培養基,其處方如下
A、Barber的變法培養基
|
牛心肌浸出物(榮研) |
100 |
g |
|
獸肉蛋白(榮研) |
50 |
g |
|
NaCl |
5 |
g |
|
葡萄糖 |
1 |
g |
|
Thallium acetate |
0.25 |
g |
|
蒸餾水 |
1000 |
ml |
pH7.8±0.1修正後,高壓滅菌,後置於4~10℃保存,使用時,取上述液體80ml加入20ml馬血清,1% phenol red 0.2ml及 penicillin G之最終含量為1000u/ml;若為供固體培養基用時上述液體中加1.5克Agar經高壓滅菌後冷卻至50℃時再加入20ml馬血清及1% phenol red 0.2ml及penicillin G。
B、Hofstad氏培養基
|
雞的肉、心、肝抽出物 |
80 |
ml |
|
10%葡萄糖液 |
1 |
ml |
|
5% Thallium acetate |
1 |
ml |
|
馬血清 |
20 |
ml |
|
1% phenol red |
0.2 |
ml |
|
penicillin G |
1000 |
單位/ml |
上述成份充分混合後,經0.45μ及0.2μ過濾膜之過濾器過濾後置於4~10℃保存備用。若為供固體培養基用時,則於80ml之雞肉心肝抽出物加入1.5克Agar經高壓滅菌後,冷卻至50℃時再加入20ml馬血清及其餘的成份。 |
(2) |
培養
A、 |
培養材料之處理:將採取冰存之試材,經回溫後除氣囊及肺材需經磨碎機磨碎成乳劑外,棉花棒之粘液試材置於37℃感作一小時,其間隨時加以振盪混合。 |
B、 |
試材之接種:將經37℃感作處理之試材取0.2ml接種至1.8ml液體培養液內,並以10倍稀釋至10-5。 |
C、 |
增殖繼代培養:將接種試材及經稀釋之培養液置於37℃恒溫水槽,經7~10天之振盪培養,其間並隨時觀察其pH值之變化,若已見酸變即刻繼代,若未見酸變者於7天後再次繼代直至3代。 |
D、 |
固體培養基培養:經液體培養基培養後(酸變者或未酸變之經液體培養基3代培養者)取0.2ml移植至固體培養基,經全面覆蓋於固體培養基面上,並把皿蓋稍為打開讓皿內之液體蒸發,俟乾燥後倒置於5% CO2,37℃培養箱內培養。 |
|
|
|
|
3. |
菌落及菌形的觀察:
當黴漿菌於固體培養基上發育形成菌落時,由於其菌落較一般細菌所形成的菌落為小,故其形態很難以肉眼觀察,須經放大鏡或實體顯微鏡25~50倍率之觀察。
(1) |
實體顯微鏡之觀察菌落:經固體培養基培養2日後,每日以25~50倍的實體顯微鏡觀察可見約0.1~0.5mm正圓形中心部呈圓形的核心,如荷包蛋樣的菌落,一般約需4~5天後才能見到M.gallisepticum之菌落形成。 |
(2) |
菌落之雞血球吸著性觀察:M.gallisepticum特徵之一,係對雞血球之吸著性,將0.25%雞血球生理食鹽液,注入約1ml於已有菌落形成之固體培養基表面上,靜置約15分鐘,然後抽棄多餘之血球液再以生理食鹽水洗滌2~3次之後,置於25~50倍實體顯微鏡觀察,若為M.gallisepticum,則可見菌落上有雞血球被吸著。 |
(3) |
黴漿菌的染色:
(a) |
顯微鏡用玻片經拭擦乾淨後,將經培養之菌液塗在上面。 |
(b) |
於火焰上慢慢使其乾燥,再漬於Bouin固定液中30分鐘。 |
(c) |
流水中30~60分鐘水流沖洗。 |
(d) |
以中性緩衝液稀釋成2倍的Giemsa染色液染色30分鐘。 |
(e) |
再水洗,乾燥後,以油鏡觀察菌形,呈多形樣,如球形、橢圓形單個,甚至於2個連鎖形態。 |
|
|
|
|
4. |
同定:
雞M.gallisepticum於同定上,除菌落形態大小及對雞血球之吸著凝集現象外,尚須以生化學及血清學的性狀同定之。
(1) |
生化學性狀
A、 |
硫酸銨之絮狀反應
(a) |
經液體培養基培養後之待測檢體,經遠心1000 rpm,30分鐘濃縮之沉澱菌體,並以燐酸緩衝食鹽液洗滌2~3次,最後配成原培養液之1/50倍濃度。 |
(b) |
硫酸銨之15、20及25%水溶液,分別以3.2ml分注於試驗管中,再把濃縮之菌液分別以0.2ml加入。 |
(c) |
各菌液與不同濃度之硫酸銨經充分振盪後混合置於55℃定溫水槽中感作10分鐘。 |
(d) |
若為M.gallisepticum則於20%及25%硫酸銨溶液試管可見清晰的棉絮狀反應。 |
|
B、 |
TTC (Triphenyltetrazolium chloride)之還原試驗:M.gallisepticum對Tetrazolium有還原性,但較其他陽性反應者為遲。
(a) |
Heart infusion agar 74ml經高壓滅菌後,於冷卻至50℃時加入已過濾滅菌之馬血清20ml,10% (W/V)酵母抽出物5ml,2% (W/V)2、3、5-Triphenyl tetrazolium chloride (TTC) 1ml,經充分混合後以3ml分注小試管製成高層。 |
(b) |
經18~24小時培養於液體培養基培養之檢體,以白金耳吊取該菌液穿刺上述高層TTC培養基內。 |
(c) |
經37℃之培養於24~96小時培養觀察,若為陽性反應則呈紅色反應,陰性則其顏色不變,M.gallisepticum約需72小時以上始呈紅色變化。 |
|
C、 |
葡萄糖、阿金氨基酸及尿素之分解試驗
(a) |
經高壓滅菌之Heart infusion broth (Difco) 222ml,馬血清30ml,10% (W/V)酵母抽出物15ml,0.5% (W/V) phenol red 3ml充分混合製成基礎培養基;另分別將葡萄糖、阿金氨基酸及尿素等被檢物質各配成10% (W/V)溶液;再將基礎培養基各取90ml,分別與各10ml被檢物質溶液混合,其中含有葡萄糖者pH修正為7.6,阿金氨基酸及尿素為7.0。再以2ml分注小試管。 |
(b) |
經18~24小時培養於液體培養基培養之檢體,取0.1ml分別接種至上述各被檢物質培養基中,並加入0.2ml的凡士林.石腊(1:1)液重層之。 |
(c) |
經37℃之一週培養,若有黃變則為陽性反應,陰性則其顏色不變,M.gallisepticum對葡萄糖為陽性,阿金氨基酸及尿素則呈陰性反應。 |
|
D、 |
Film and spots表面斑點試驗:
部份的黴漿菌於含冇卵黃的培養基表面上會形成斑點稱為Film and spots的特徵
(a) |
將經高壓滅菌後之Heart infusion agar 75ml,於冷卻至50℃時加入馬血清5ml,Egg yolk emulsion (Difco) 10ml,25% (W/V)酵母抽出物10ml,分注於培養皿,製成固體培養 |
(b) |
將被檢菌取0.5~1.0ml接種至上述固體培養基後令其全面覆蓋培養基面,置於37℃把皿蓋稍為打開,讓皿內之液體蒸發乾燥後,倒置於5% CO2 37℃培養箱內培養。 |
(c) |
經37℃ 1~2週培養,若表面有紋斑存在即為陽性,否則為陰性,M.gallisepticum為陰性,而M.gallinarum為陽性。 |
|
E、 |
溶血性試驗:
部份黴漿菌對綿羊或天竺鼠之血液有溶血現象,此仍為其特性之一。
(a) |
Bacto-agar (Difco)以PBS配成1%溶液,修正pH為7.4,分注4.5ml於試驗管內經高壓滅菌之。綿羊或天竺鼠血液經PBS三次遠心洗條後配成50%溶液,取0.5ml加入前述寒天內輕輕搖動混合之,並維持50℃之溫度。 |
(b) |
將於固體培養基上培養4~7天之菌落上,滴一滴上述之血球寒天液重層之,置於 35℃ 12~36 小時。 |
(c) |
於每日取出於顯微鏡觀察前先置於4℃ 30分鐘,再以40倍觀察,於菌落周圍有綠色帶者為α溶血,若為透明帶則為β溶血,M.gallisepticum 為β溶血。 |
|
|
(2) |
血清學的性狀:
黴漿菌之同定上,以對應之標準抗血清的作用與否,為最確實之準則。
A、 |
發育阻止試驗:
黴漿菌於培養基中培養時,若有對應之抗血清存在下,菌體被抗血清中和,其發育將受阻止,故可利用此現象以同定其種別。
抗血清的製作:
(a) |
將標準菌株經液體培養基大量培養3~7天後 (3000~5000ml),以30000 G三次遠心洗滌,濃縮成原菌液量的1/50~1/100倍之菌液,分注於小試管2ml置-70℃備用。 |
(b) |
將濃縮抗原與等量的Freund complete adjuvant混合後以1ml皮內注射家兔;3週後抗原與等量的Freund incomplete adjuvant混合後,以1ml皮內注射;經3週後以不加adjuvant之抗原2ml腹腔內注射,1週後採血分離血清。 |
(c) |
抗血清濾紙的製作:將直徑8mm之濾紙吸取標準抗血清後,置於4~10℃水箱內使其乾燥,然後改置於-20℃保存備用。 |
(d) |
發育阻止試驗術式:待測檢體經液體培養基37℃ 24~48小時培養後,取0.5ml接種至固體培養基,令其全面覆蓋培養基面,置於37℃,把皿蓋稍為打開,讓皿內之液體蒸發乾燥後;把抗血清濾紙置於培養基面上,然後倒置於5% CO2,37℃培養箱內培養,經2~3天培養,觀察其發育阻止圈,若檢驗體與抗血清為同種時,則可見明顯發育阻止圈,否則無發育阻止圈形成。 |
|
B、 |
代謝阻止試驗:
黴漿菌於培養基中發育時產生代謝物質,將引起pH值之變化,致培養基中的色調有所改變,故於培養基中加入對應抗血清時,將阻止黴漿菌的發育,相對地其代謝活性也受阻,培養的色調變化也有受阻現象,故以此理可同定黴漿菌的種別。
(a) |
代謝阻止試劑之配製:各以Hayflick之處方為基礎培養基【2.1% PPLO broth W/O cv (Difco) 7%;馬血液2%;25%新鮮酵母抽出液1%;Thalium acetate 1 : 2000;青黴素G 500 u/ml;phenol red 0.002%】分別加入被檢物質如1%葡萄糖,L-arginine,2,3,5-triphenyltetra zolium chloride等,並把pH調整至7.4~7.6,再分別以3ml分裝於小試管,置於4~10℃備用。 |
(b) |
代謝阻止試驗術式:經18~24小時培養於液體培養基之檢體,分別以上述各被檢物質培養液稀釋成104 CFU/ml;同樣以各被檢物質培養液把抗血清依2倍釋稀法稀釋成40~640倍不同稀釋倍數;然後由不同稀釋倍之血清中各取0.25ml,黴漿菌稀釋液0.5ml,分別與各代謝阻止試驗用之培養液1.25ml混合之;經37℃,3~7日培養觀察,若有色變即為陽性反應。也即是檢體與抗血清為同種。 |
|
|
|
|
|
1. |
全血平板凝集反應:
(1) |
抗原的製作
(a) |
黴漿菌之增殖培養:凍結乾燥保存菌株,先以5ml的增殖培養液於37℃,3~4天培養後,移植至100ml,培養3~4天;最後再以3000~5000ml培養增殖7天。 |
(b) |
黴漿菌之濃縮:經大量增殖的黴漿菌,以12000~15000rpm,30分鐘高速遠心,並經燐酸緩衝食鹽液依同法洗滌2~3次。 |
(c) |
濃縮抗原的調配:將濃縮之菌體浮游之,其濃度調整成約為原培養液之1/50~1/100倍量。 |
(d) |
凝集抗原之著色:將配成適當濃度之抗原中,加入0.01% sodium azide之防腐劑及結晶紫染色劑,經充分混合後,置於4~10℃水箱保存備用。 |
|
(2) |
全血平板凝集反應術式:
(a) |
將受測之雞隻採取之全血1滴與全血平板凝集抗原2滴,置於玻片上經充分的混合。 |
(b) |
判定:於1分鐘之內呈現粗顆粒狀之凝集者為陽性,1分鐘至2分鐘出現較細之顆粒狀凝集者為疑陽性,否則為陰性反應。 |
|
|
|
|
2. |
血清平板凝集反應:
(1) |
抗原的製作
(a) |
黴漿菌之增殖培養:凍結乾燥保存菌株,先以5ml的增殖培養液於37℃,3~4天培養,移植至100ml,培養3~4天;最後再以3000~5000 ml培養增殖7天。 |
(b) |
黴漿菌之濃縮:經大量增殖的黴漿菌,以12000~15000rpm,30分鐘高速遠心,並經燐酸緩衝食鹽液依同法洗滌2~3次。 |
(c) |
濃縮抗原的調配:將濃縮之菌體浮游之,其濃度調整成約為原培養液之1/50~1/100倍量。 |
(d) |
凝集抗原之著色:將配成適當濃度之抗原中,加入0.01% sodium azide 之防腐劑及結晶紫染色劑,經充分混合後,置於4~10℃水箱保存備用。 |
|
(2) |
血清平板凝集反應術式:將受測之雞隻血清1滴與平板凝集抗原1滴,置於玻片上經充分的混合。 |
(3) |
判定:於1分鐘之內呈現粗顆粒之凝集者為陽性,1分鐘至2分鐘出現較細之顆粒狀凝集者為疑陽性,否則為陰性反應。 |
|
|
|
3. |
試管內凝集反應
(1) |
抗原的製作:黴漿菌種菌經液體培養基於37℃ 3~4天之大量培養後以12000~15000rpm,30分鐘高速遠心,並經燐酸緩衝食鹽液依同法遠心洗滌3次,最後配製成原培養液之1/10量菌液,加入0.01% sodium azide 防腐劑置4~10℃冰箱保存備用。 |
(2) |
試管內凝集反應術式:將受測之雞血清稀釋成5倍,置於56℃ 30分鐘非動化後,再依二倍稀釋法稀釋成5~640倍;然後各加入等量的凝集抗原,經充分之混合後,罝於37℃恒溫槽內感作2小時後再改置於10℃一夜。 |
(3) |
判定:血清最高稀釋倍數處呈現之凝集反應,即為該受測血清之抗體力價,血清稀釋倍20倍以上呈凝集者為陽性例,10倍者為疑陽性,10倍以下不呈凝集者陰性例。 |
|
|
|
4. |
血球凝集抑制反應:
M.gallisepticum,因對雞血球有凝集之特性,於患禽之血清中,存有阻止該菌阻止血球凝集抗體,故應用該原理可測出雞隻是否有感染本症。
(1) |
抗原之製作:M.gallisepticum經37℃,5~6天大量增殖培養後12000~15000rpm,30分鐘高速遠心,並經燐酸緩衝食鹽液洗滌2~3次後,配成適當濃度的菌液,並加入0.01%量的sodium azide ,置於4~10 ℃保存備用。 |
(2) |
0.25%雞紅血球浮游液之配製:新鮮雞血液加等量Alsever液保存於4~10℃,經磷酸緩衝食鹽液,以2000rpm 10分鐘遠心洗滌3次後,再配成0.25%的血球浮游液。 |
(3) |
血球凝集抑制反應術式
(a) |
抗原之血球凝集價測定:使用96孔U字形微量塑膠凝集盤,保存於4~10℃之血球凝集抗原,以磷酸緩衝食鹽液依2倍稀釋法稀釋成2~4096倍後,加入等量之0.25%雞血球浮游液;置於室溫2小時後判讀其力價,以完全凝集之最高稀釋倍為其凝集力價,該最高稀釋倍數為一單位,進入本試驗時(即HI價之測定)則使用四單位。 |
(b) |
受測血清的稀釋:以96孔U字形微量塑膠凝集盤,將受測血清以2倍稀釋法稀釋成 5~640 倍,其各孔之稀釋血清量為0.025ml。 |
(c) |
抗原與受測血清之感作:於稀釋完成之受測血清中,各加入等量(0.025ml)四單位的血球凝集抗原液,經充分振盪混合後,置於室溫15分鐘感作。 |
(d) |
0.25%雞血球之感作與判讀:抗原與受測血清經感作後,各加入等量(0.05ml)的0.25%雞血球浮游液,經充分振盪混合後,置於4~10℃水箱一夜,判讀,於血清最高稀釋倍數處為完全阻止血球凝集,為該受測血清之抗體力價,於80倍以上量完全阻止血球凝集者為陽性例。 |
|
|
|